Benutzerspezifische Werkzeuge

Information zum Seitenaufbau und Sprungmarken fuer Screenreader-Benutzer: Ganz oben links auf jeder Seite befindet sich das Logo der JLU, verlinkt mit der Startseite. Neben dem Logo kann sich rechts daneben das Bannerbild anschließen. Rechts daneben kann sich ein weiteres Bild/Schriftzug befinden. Es folgt die Suche. Unterhalb dieser oberen Leiste schliesst sich die Hauptnavigation an. Unterhalb der Hauptnavigation befindet sich der Inhaltsbereich. Die Feinnavigation findet sich - sofern vorhanden - in der linken Spalte. In der rechten Spalte finden Sie ueblicherweise Kontaktdaten. Als Abschluss der Seite findet sich die Brotkrumennavigation und im Fussbereich Links zu Barrierefreiheit, Impressum, Hilfe und das Login fuer Redakteure. Barrierefreiheit JLU - Logo, Link zur Startseite der JLU-Gießen Direkt zur Navigation vertikale linke Navigationsleiste vor Sie sind hier Direkt zum Inhalt vor rechter Kolumne mit zusaetzlichen Informationen vor Suche vor Fußbereich mit Impressum

Artikelaktionen

Schwarzländer, Markus Münster

Expertise: Regulation of mitochondrial physiology and respiratory metabolism in plants; thiol redox control of, and by, plant mitochondrial respiration and its impact on cellular bioenergetics; stress-induced remodeling mechanisms of mitochondrial function in the model plant Arabidopsis; thiol redox dynamics and heterogeneity of individual mitochondria; mitochondrial energy- and redox-signaling strategies

Methodology provided: Techniques required for the quantitative use of fluorescent protein sensors in mitochondria in vitro, in organello and in vivo (i.e. in planta) will be contributed. This includes the characterisation and usage of redox sensors for glutathione, hydrogen peroxide and NADH/NAD, complemented by probes for pH, calcium and ATP/ADP. Confocal microscopy and FLIM is used to study functional and structural dynamics of individual mitochondria. Highly intact, functional mitochondria can be prepared from various plant tissues as an in organello system to dissect mitochondrial redox metabolism and regulation by combining classical bioenergetic assays with fluorometric measurements of the sensors. The majority of methods are directly applicable beyond plants to a wide range of organisms